Studiare
In questa sezione è possibile reperire le informazioni riguardanti l'organizzazione pratica del corso, lo svolgimento delle attività didattiche, le opportunità formative e i contatti utili durante tutto il percorso di studi, fino al conseguimento del titolo finale.
Tipologia di Attività formativa D e F
Queste informazioni sono destinate esclusivamente agli studenti e alle studentesse già iscritti a questo corso.Se sei un nuovo studente interessato all'immatricolazione, trovi le informazioni sul percorso di studi alla pagina del corso:
Laurea in Bioinformatica - Immatricolazione dal 2025/2026| anni | Insegnamenti | TAF | Docente |
|---|---|---|---|
| 3° | Lab.: The fashion lab (1 cfu) | D |
Maria Caterina Baruffi
(Coordinatore)
|
| anni | Insegnamenti | TAF | Docente |
|---|---|---|---|
| 3° | Linguaggio programmazione Python | D |
Maurizio Boscaini
(Coordinatore)
|
| anni | Insegnamenti | TAF | Docente |
|---|---|---|---|
| 3° | Laboratorio ciberfisico | D |
Andrea Calanca
(Coordinatore)
|
| 3° | Linguaggio Programmazione C++ | D |
Federico Busato
(Coordinatore)
|
| 3° | Linguaggio Programmazione LaTeX | D |
Enrico Gregorio
(Coordinatore)
|
| 3° | Linguaggio Programmazione Matlab-Simulink | D |
Bogdan Mihai Maris
(Coordinatore)
|
| anni | Insegnamenti | TAF | Docente |
|---|---|---|---|
| 3° | Corso Europrogettazione | D | Non ancora assegnato |
| 3° | Minicorso Blockchain | D |
Matteo Cristani
|
Laboratorio di biologia molecolare (2019/2020)
Codice insegnamento
4S01911
Crediti
6
Lingua di erogazione
Italiano
Settore Scientifico Disciplinare (SSD)
BIO/11 - BIOLOGIA MOLECOLARE
L'insegnamento è organizzato come segue:
Laboratorio [II turno]
Laboratorio [I turno]
Teoria
Obiettivi formativi
L’obiettivo primario del corso è rappresentato dall’apprendimento delle metodologie necessarie allo svolgimento delle più comuni pratiche di manipolazione del DNA. In particolare gli studenti apprende-ranno le principali tecniche di purificazione degli acidi nucleici, la loro separazione mediante elettrofo-resi, l'amplificazione del DNA e le metodologie per clonaggio in vettori batterici.
Nelle esercitazioni pratiche è prevista l'applicazione delle principali tecniche di purificazione del DNA plasmidico e genomico, la separazione del DNA mediante elettroforesi su gel di agarosio, la sua di-gestione con enzimi di restrizione, la preparazione di costrutti genici e la loro trasformazione in E. coli.
Al termine del corso lo studente avrà appreso le nozioni basilari riguardanti la manipolazione del ma-teriale genetico e sarà in grado di utilizzare le principali tecniche di laboratorio per il clonaggio di geni.
Programma
Teoria:
Il DNA ricombinate. Clonaggio di Geni.
Vettori batterici e non batterici. Librerie genomiche e di cDNA.
Manipolazione degli acidi nucleici. Digestione con endonucleasi di restrizione. Elettroforesi. Ligazione del DNA.
Reazione a Catena della Polimerasi (PCR). Applicazioni
Colutre batteriche. Trasformazione di cellule batteriche ed eucatriotiche.
Produzione di proteine da geni clonati.
Esercitazioni di Laboratorio:
Purificazione di DNA plasmidico
Purificazione di DNA genomico
Purificazione di RNA
Elettroforesi e purificazione del DNA da gel
Digestione con enzimi di restrizione
PCR e purificazione dell'amplicone
Trasformazione, colony PCR
Espressione di una proteina ricombinante e analisi mediante SDS PAGE e Western Blot.
Bibliografia
| Attività | Autore | Titolo | Casa editrice | Anno | ISBN | Note |
|---|---|---|---|---|---|---|
| Laboratorio | Jeremy W. Dale e Malcolm von Schantz | Dai geni ai genomi (Edizione 2) | EdiSES | 2012 | ||
| Laboratorio | Karcher | LABORATORIO DI BIOLOGIA MOLECOLARE | ed Zanichelli | 1998 | ||
| Teoria | Jeremy W. Dale e Malcolm von Schantz | Dai geni ai genomi (Edizione 2) | EdiSES | 2012 | ||
| Teoria | Karcher | LABORATORIO DI BIOLOGIA MOLECOLARE | ed Zanichelli | 1998 |
Modalità d'esame
La prova finale consiste in una relazione sull'attività di laboratorio (da consegnare prima dell'appello d'esame) ed colloquio orale. Il voto sarà la media delle due prove.
